எங்கள் குழு ஒவ்வொரு ஆண்டும் அமெரிக்கா, ஐரோப்பா மற்றும் ஆசியா முழுவதும் 1000 அறிவியல் சங்கங்களின் ஆதரவுடன் 3000+ உலகளாவிய மாநாட்டுத் தொடர் நிகழ்வுகளை ஏற்பாடு செய்து 700+ திறந்த அணுகல் இதழ்களை வெளியிடுகிறது, இதில் 50000 க்கும் மேற்பட்ட தலைசிறந்த ஆளுமைகள், புகழ்பெற்ற விஞ்ஞானிகள் ஆசிரியர் குழு உறுப்பினர்களாக உள்ளனர்.
அதிக வாசகர்கள் மற்றும் மேற்கோள்களைப் பெறும் திறந்த அணுகல் இதழ்கள்
700 இதழ்கள் மற்றும் 15,000,000 வாசகர்கள் ஒவ்வொரு பத்திரிகையும் 25,000+ வாசகர்களைப் பெறுகிறது
Nadine Griesche, Verena Pesch, Rohit Nalavade, Stephanie Weber, Ireen König, Manuel Schölling, Christoph Möhl and Sybille KrauB
Traditionally, studies on protein translation rely on systems, in which cells have been lysed prior determination of levels of the protein of interest. However, these assays do not reflect the protein synthesis in living cells in real time, but analyze protein levels after a given incubation time, leading to limitations in results based on experimental parameters. To overcome this problem, we have previously established a Fluorescence recovery after photobleaching (FRAP)-based technique to monitor protein translation in living cells. For this, the protein of interest fused to green fluorescent protein (GFP) is expressed in cell lines. After bleaching the entire cell, the fluorescent signal of the protein of interest is lost, allowing to capture the signal recovery of newly translated GFPtagged protein over time. Here we present two improved versions of this technique using different fluorescent dyes: tFRAP (translational FRAP). For the first improved version of tFRAP we have inserted a second fluorescent dye, red fluorescent protein (RFP), into the same expression vector that drives expression of the protein of interest fused to GFP driven by a second promoter. For the second improved version of tFRAP we have fused our protein of interest to a photo-switchable dye, Dendra2. Both improved versions allow to correct the fluorescence signal intensity of the protein of interest for different transfection rates of individual cells. These two advanced techniques are new powerful tools for quantifying translation rates in living cells and will be useful in future studies on mRNA translation.